<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<xml>
 <records>
  <record>
   <ref-type name="Journal Article">17</ref-type>
   <contributors>
    <authors>
     <author>Билялов, А. Р.</author>
     <author>Пятницкая, С. В.</author>
     <author>Рафикова, Г. А.</author>
     <author>Акбашев, В. Н.</author>
     <author>Бикмеев, А. Т.</author>
     <author>Ахатов, И. Ш.</author>
     <author>Шангина, О. Р.</author>
     <author>Чугунов, С. С.</author>
     <author>Тихонов, А. А.</author>
    </authors>
   </contributors>
   <titles>
    <title>ВЛИЯНИЕ МЕТОДОВ СТЕРИЛИЗАЦИИ НА ЦИТОТОКСИЧНОСТЬ КЕРАМИЧЕСКИХ МЕДИЦИНСКИХ ИМПЛАНТОВ</title>
   </titles>
   <keywords>
    <keyword>медицинская керамика</keyword>
    <keyword>3D-печать</keyword>
    <keyword>аддитивные технологии</keyword>
    <keyword>стерилизация</keyword>
    <keyword>импланты</keyword>
    <keyword>жизнеспособность клеток</keyword>
    <keyword>керамика</keyword>
    <keyword>Scopus</keyword>
    <keyword>Web of Science</keyword>
   </keywords>
   <dates>
    <year>2025</year>
    <pub-dates>
     <date>2025-04-30</date>
    </pub-dates>
   </dates>
   <doi>10.24075/brsmu.2025.009</doi>
   <abstract>Выбор метода стерилизации керамических имплантов играет ключевую роль, поскольку может оказывать влияние на химические и физико-механические&#13;
свойства материала и его биосовместимость. Возможное повышение цитотоксичности после стерилизации негативно влияет на остеоинтеграцию.&#13;
Целью исследования было определить цитотоксичность керамических образцов с пористой структурой после проведения наиболее распространенных&#13;
методов стерилизации. Методом стереолитографии были подготовлены образцы из гидроксиапатита, трикальцифосфата и оксида алюминия. Образцы из&#13;
костного аллографта были изготовлены методом DLP. Отжиг проводили при 800 °C и скорости нагрева 3 °C в минуту 4 ч, а спекание при температуре до&#13;
1200 °C. Использовали следующие методы стерилизации: автоклавирование при 1 атм, 120 °С, 45 мин; радиационная стерилизация, 25 с с поглощенной&#13;
дозой 25 кГр; плазменно-перекисная стерилизация, 42 мин; стерилизация сухим жаром при 180 °С 60 мин. Цитотоксичность определяли МТТ-тестом&#13;
с экспозицией в СО2&#13;
 инкубаторе 24 ч. Результаты исследования: для ГА высокая пористость увеличивает значения при переходе от автоклавирования&#13;
(0,1115) к плазменно-перекисной стерилизации (0,2023). Средняя и низкая пористость показывают аналогичное поведение, с пиками при сухожаровой&#13;
стерилизации (0,4954 и 0,4505). Для ОА характерна высокая жизнеспособность при сухожаровой стерилизации. Результаты для ТКФ стабильны, но&#13;
при низкой пористости заметен рост после автоклавирования (0,078 до 0,182 при стерилизации сухим жаром). Исследование формирует о</abstract>
   <urls>
    <web-urls>
     <url>https://repo.bashgmu.ru/publication/4955</url>
    </web-urls>
    <pdf-urls>
     <url>https://repo.bashgmu.ru/files/5131</url>
    </pdf-urls>
   </urls>
  </record>
 </records>
</xml>
